IEC-6大鼠小肠隐窝上皮细胞系
IEC-6大鼠小肠隐窝上皮细胞系作为源自大鼠小肠隐窝的上皮细胞模型，因保留肠道隐窝细胞的增殖分化特性及肠黏膜屏障功能，在肠黏膜修复机制、肠道疾病病理研究中应用广泛，成为探究肠道上皮细胞生物学特性的重要实验工具。
细胞特性与来源背景：该细胞系源自大鼠正常小肠隐窝组织，经原代培养和永生化处理建立。细胞形态呈典型上皮样，多为圆形或短梭形，排列紧密呈铺路石样，胞质内可见丰富的粗面内质网，约 6% 细胞呈现双核现象，细胞核呈圆形，核仁清晰。生长方式为贴壁生长，具有明显接触抑制，传代后 24 小时贴壁率达 94%。核心参数表现出小肠隐窝细胞特征：倍增时间约 48 小时，连续传代 50 次后仍保持正常二倍体核型（染色体数 42 条）；肠道上皮标志物细胞角蛋白 20（CK20）免疫荧光阳性率达 96%，绒毛蛋白（villin）表达丰富；增殖标志物 Ki-67 阳性率在对数生长期达 35%，显著高于成熟肠上皮细胞；无微生物污染，细胞纯度达 97%，保障实验结果的可靠性。
科研应用价值：在肠黏膜修复机制研究中，IEC-6 细胞经表皮生长因子（EGF）处理 24 小时后，迁移能力提升 42%，增殖活性增强 38%，紧密连接蛋白 claudin-1 表达量增加 52%，可模拟肠黏膜损伤后的修复过程，为解析肠道修复机制提供理想模型。肠道疾病研究方面，该细胞在脂多糖（LPS）刺激下，肿瘤坏死因子 -α（TNF-α）分泌量增加 4.8 倍，屏障功能指标跨上皮电阻（TEER）值下降 56%，能很好地模拟肠道炎症状态下的上皮损伤，助力肠道炎症疾病的机制研究。在药物筛选领域，该细胞对肠黏膜保护药物反应敏感，经谷an酰胺处理后，LPS 诱导的细胞凋亡率下降 40%，屏障功能恢复 35%，适用于评估药物的肠道保护作用。此外，将该细胞与肠道菌群共培养，可构建体外肠道微生态模型，用于研究菌群与肠道上皮的相互作用。
培养与保存规范：推荐使用含 10% 胎牛血清的 DMEM 培养基，添加 1% 非必需氨基酸、1% 抗生素混合液，培养环境为 37℃、5% CO₂饱和湿度的恒温培养箱。培养基需每 2-3 天更换一次，更换时动作轻柔以避免细胞脱落。传代时采用 0.25% 胰dan白酶 - EDTA 消化液处理，37℃孵育 5-7 分钟，待细胞间隙增大后加入含血清的培养基终止消化，传代比例为 1:3-1:4，每 4-5 天传代一次，维持细胞融合度在 70%-80% 以保持正常功能。冻存液配方为基础培养基 + 10% DMSO+20% 胎牛血清，经程序降温（-20℃1 小时→-80℃过夜→液氮保存）后，复苏细胞存活率达 91% 以上，3-4 代内可恢复正常的增殖分化能力。运输采用 T-25 培养瓶活细胞运输，收到细胞后需静置培养 24 小时，更换培养基后观察细胞形态，确认无异常漂浮物后进行后续实验。该细胞系仅限科研使用，禁止用于临床诊疗相关研究。
IEC-6 大鼠小肠隐窝上皮细胞系以其稳定的肠道上皮功能、活跃的增殖特性及易于培养的优势，在肠道生理与病理研究及药物研发中发挥着重要作用，为揭示肠道相关疾病的发病机制提供了可靠的细胞模型。
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