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染色体核型:保留非洲绿猴二倍体核型(2n=44),但因 SV40 转化可能出现部分染色体结构变异,长期传代后异倍体比例<15%。
病毒易感性:组成性表达 SV40 T 抗原,支持 SV40 野生株及其温度敏感突变株(如 tsA209)的复制,同时对腺病毒、痘苗病毒等 DNA 病毒具有感染相容性。
转染特性:对脂质体、电穿孔等转染方法高度敏感,瞬时转染效率可达 80%-90%(如使用 GenJet™试剂),适用于高通量基因功能筛选。
瞬时表达系统:携带 SV40 ori 的质粒(如 pSV2 系列)在 COS-7 中可实现外源基因的超表达,常用于蛋白质结构解析、信号通路调控机制研究。例如,通过共转染荧光标记的膜蛋白与 G 蛋白偶联受体,可实时观察受体激活后的胞内信号转导动态。
基因编辑平台:结合 CRISPR-Cas9 技术,可高效构建基因敲除或点突变细胞系,45 天内即可完成定制化模型开发,适用于肿瘤抑制基因功能验证与药物靶点筛选。
病毒复制机制解析:COS-7 支持 SV40 全生命周期的研究,包括病毒 DNA 复制、衣壳组装及宿主免疫逃逸机制。例如,通过温度敏感突变株 tsA209 的温度转换实验,揭示了大 T 抗原在病毒早期基因表达中的关键作用。
疫苗抗原生产:利用其高效表达能力,可生产病毒样颗粒(VLPs)作为亚单位疫苗。例如,在 COS-7 中表达人乳头瘤病毒(HPV)L1 蛋白,自组装形成的 VLPs 已用于宫颈癌疫苗的临床前研究。
复杂蛋白表达:支持糖基化、磷酸化等翻译后修饰,适用于生产具有生物活性的治疗性蛋白。例如,分泌表达人羧肽酶 A1(CPA1)全酶及其功能肽段,为酶替代疗法提供了关键原料。
药物筛选模型:通过稳定表达疾病相关受体(如 GPCRs),构建高通量药物筛选平台。例如,在 COS-7 中表达阿片受体,用于新型镇痛药物的亲和力与活性评价。
培养基:DMEM 高糖培养基(含 4.5g/L 葡萄糖)添加 10% 胎牛血清、1% 青mei素 - 链mei素,pH 7.2-7.4。
传代流程:当细胞融合度达 80%-90% 时,弃旧培养基,PBS 洗涤后加入 Accutase 消化液(替代传统yi酶以减少细胞损伤),37℃孵育 3-5 分钟至细胞脱落,按 1:3 比例接种新培养皿。
冻存保护:使用含 10% DMSO 的培养基重悬细胞至密度 5×10⁶ cells/mL,程序降温后液氮保存。
病毒接种:以 MOI=10-50 感染 SV40 病毒,吸附 2 小时后更换含 2% 血清的维持培养基,72 小时后收集细胞裂解液提取病毒颗粒。
质粒转染:采用脂质体法时,DNA 与转染试剂比例为 1:3(如 Lipofectamine™ LTX),无血清培养基孵育 4-6 小时后换全培养基,48-72 小时后检测蛋白表达。
高转染效率:瞬时表达外源基因的能力显著优于 HEK293 等常用细胞系,尤其适用于低丰度蛋白的研究。
病毒支持性广:除 SV40 外,还可用于腺相关病毒(AAV)、痘苗病毒等多种 DNA 病毒的包装与扩增。
培养简便:对血清依赖度低,可在含 5% 血清的培养基中稳定生长,适合大规模工业化生产。
遗传稳定性:长期传代可能导致 SV40 T 抗原表达水平下降,影响质粒复制效率(传代>50 次时拷贝数降低约 30%)。
翻译后修饰差异:与人类细胞相比,糖基化模式存在物种特异性,可能影响治疗性蛋白的免疫原性。
病毒安全性:需严格控制 SV40 污染风险,部分研究提示其可能与人类肿瘤发生相关(尽管尚未确证)。
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