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来源与构建:该细胞系以 CHO-S 为亲本,通过慢病毒载体介导将 E2-Fc 融合基因导入细胞基因组,经 Zeocin 抗性筛选及单克隆纯化获得稳定株。融合基因由 EF1α 启动子驱动表达,E2 片段源自病毒包膜蛋白(如丙型肝炎病毒或冠状病毒),C 端连接人 IgG1 的 Fc 段,名称中 “E2-Fc" 直接标识其表达的核心功能蛋白 —— 兼具 E2 免疫原性与 Fc 段稳定性的融合分子。构建过程中引入信号肽优化序列,确保蛋白高效分泌至培养基(分泌效率达 90% 以上)。
形态与增殖:体外培养呈上皮样形态,贴壁生长时呈多角形,排列紧密;悬浮培养可形成直径 20-50μm 的松散聚集体,细胞轮廓清晰,活力长期维持在 92% 以上。37℃、5% CO₂条件下,增殖周期约 30-36 小时,适应含 10% 胎牛血清的 DMEM/F12 培养基与多种无血清化学限定培养基,传代 80 次以上仍保持稳定生长速率,E2-Fc 表达量波动<8%,冻存复苏后存活率超 89%。
功能特征:该细胞系的核心优势在于 E2-Fc 融合蛋白的双重功能特性:E2 部分保留天然病毒抗原表位(ELISA 检测与特异性抗体结合率>95%),可诱导特异性免疫应答;Fc 段赋予蛋白更长半衰期(体外稳定性达 14 天以上),同时便于通过 Protein A 亲和层析快速纯化(纯度一步可达 95% 以上)。流式细胞术检测显示,细胞表面无 E2-Fc 滞留,98% 以上的表达蛋白分泌至培养基,避免了胞内积累导致的细胞毒性。
病毒疫苗研发
免疫机制研究
抗病du药物筛选
贴壁培养操作:
复苏:从液氮取出冻存管,37℃水浴 1-2 分钟解冻,转移至含 10mL 预热培养基(DMEM/F12+10% 胎牛血清 + 50μg/mL Zeocin)的离心管,1000rpm 离心 5 分钟,重悬后接种至 T75 培养瓶,37℃、5% CO₂培养箱静置培养。
换液:接种 24 小时后首ci换液,去除未贴壁细胞,此后每 48 小时换液一次,收集上清可用于蛋白初步检测(ELISA 法检测浓度约 5-8μg/mL)。
传代:当细胞融合度达 80%-90% 时,弃培养基,PBS 清洗 2 次,加入 2mL 细胞解离液,37℃孵育 3 分钟,镜检细胞脱落后加入 8mL 培养基终止解离,按 1:4 比例传代至新培养瓶。
悬浮培养与蛋白纯化:
冻存流程:取对数生长期细胞,1000rpm 离心 5 分钟,用冻存液(80% 无血清培养基 + 10% 胎牛血清 + 10% DMSO)重悬至 6×10⁶个 /mL,分装至冻存管,程序降温盒 - 80℃过夜,次日转移至液氮保存,保存期可达 5 年以上,复苏后需在含 Zeocin 的培养基中培养 2-3 代以稳定表达。
优势:E2-Fc 蛋白表达稳定,批间活性差异<7%;Fc 段便于快速纯化,纯化步骤较 His 标签蛋白减少 2 步;融合蛋白半衰期长(体外 4℃保存 14 天活性保留 90%);与原代细胞相比,可无限传代且实验重复性高(变异系数<6%)。
局限性:Fc 段可能干扰部分抗原表位的免疫识别,需结合无 Fc 标签的 E2 蛋白验证;高表达时(>10μg/mL)可能抑制细胞增殖,需定期更换培养基;培养成本高于普通 CHO 细胞(因无血清培养基价格较高)。
以上信息仅供参考,详细信息请联系我们。
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