Wistar大鼠骨髓MSC细胞系
Wistar大鼠骨髓MSC细胞系作为源自 Wistar 大鼠骨髓基质的成体干细胞模型，因具备多向分化潜能、免疫调节功能及组织修复能力，在干细胞生物学、再生医学及疾病治疗研究中具有不可替代的价值，成为探究间充质干细胞特性及应用的重要实验工具。
细胞特性与来源背景：该细胞系源自 Wistar 大鼠骨髓腔的基质细胞，经密度梯度离心法分离和贴壁筛选获得。细胞形态呈典型的成纤维细胞样，多为长梭形或纺锤形，胞体大小均匀（长度约 50-80μm，宽度约 15-20μm），胞质呈弱嗜碱性，可见丰富的粗面内质网和高尔基体，约 10% 细胞可见分支状突起，细胞核呈长椭圆形，位于细胞中央，核仁小而清晰。生长方式为贴壁生长，呈漩涡状或放射状排列，接触抑制较弱，传代后 24 小时贴壁率达 95%。核心参数符合间充质干细胞特征：倍增时间约 36 小时，连续传代 25 次后仍保持稳定的生物学特性；表面标志物表达du特，CD29 阳性率达 98%，CD90 阳性率 96%，CD44 阳性率 95%，而造血细胞标志物 CD34 阳性率低于 2%，CD45 阳性率低于 1%；具有正常的二倍体核型（染色体数 42 条），无染色体畸变；多向分化潜能显著，在成骨诱导培养基中培养 14 天后，碱性磷酸酶活性提升 8 倍，钙结节形成率达 85%；在成脂诱导条件下，脂滴形成率达 75%，脂肪特异性蛋白 PPARγ 表达量增加 6 倍；在成软骨诱导环境中，Ⅱ 型胶原蛋白分泌量达 45ng/mL；免疫调节功能突出，可分泌 IL-10、TGF-β 等抑炎因子，基础 IL-10 分泌量达 28pg/mL；无微生物污染，细胞纯度达 97%，保障实验结果的可靠性。
科研应用价值：在再生医学研究中，Wistar 大鼠骨髓 MSC 与骨缺损模型结合时，可促进新骨形成，术后 4 周骨缺损修复率达 65%，骨密度较对照组增加 40%，成骨相关基因 Runx2 表达量提升 5.2 倍，可模拟干细胞在骨组织再生中的作用，为骨缺损修复研究提供理想模型。
免疫调节机制研究方面，该细胞与 T 淋巴细胞共培养时，可抑制 T 细胞增殖活性达 55%，调节性 T 细胞比例增加 30%，炎症因子 IFN-γ 分泌量下降 45%，可模拟间充质干细胞对免疫应答的调控过程，适用于探究自身免疫性疾病的发病机制及治疗策略。
疾病治疗研究领域，该细胞经缺氧预处理后，血管内皮生长因子（VEGF）分泌量增加 4.8 倍，移植到心肌缺血模型后，可促进血管新生，缺血区域血流量提升 50%，心肌细胞凋亡率下降 35%，能很好地模拟干细胞在缺血性疾病中的治疗效应，为探究干细胞移植治疗心血管疾病的机制提供实验基础。此外，该细胞与软骨细胞共培养时，可促进软骨细胞外基质合成，Ⅱ 型胶原蛋白含量增加 3.2 倍，可用于探究干细胞在软骨组织工程中的应用潜力。
培养与保存规范：推荐使用含 10% 胎牛血清的 α-MEM 培养基，添加 1% 抗生素混合液，培养环境为 37℃、5% CO₂饱和湿度培养箱。培养基需每 2 天更换一次，以维持细胞的增殖活性和分化潜能。传代时，用 PBS 冲洗细胞 2 次，加入专用细胞解离液，37℃孵育 5-7 分钟，待细胞间隙增大后轻轻吹打使细胞脱落，传代比例为 1:3-1:5，每 3-4 天传代一次，避免细胞过度密集导致分化。
冻存液采用培养基 + 10% DMSO+20% 胎牛血清的混合液，细胞浓度调整为 5×10⁶个 /ml，经程序降温（-20℃1 小时→-80℃过夜→液氮保存）后，复苏存活率达 90% 以上，2-3 代内可恢复正常的生长和分化功能。运输采用干冰冷冻运输或培养瓶活细胞运输，收到细胞后需静置培养 24 小时，更换培养基后观察细胞形态，确认无异常漂浮物且排列规则后进行实验。该细胞系仅限科研使用，操作时需避免频繁更换血清批次，以防影响细胞的分化潜能。
Wistar 大鼠骨髓 MSC 细胞系以其稳定的干细胞特性、强大的分化潜能及显著的免疫调节功能，在干细胞生物学研究与再生医学应用中发挥着重要作用，为揭示干细胞的生物学特性和开发新型细胞治疗策略提供了可靠的细胞模型。
以上信息仅供参考，详细信息请联系我们。
详细介绍
产品咨询
联系我们
