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来源与构建:该细胞系以 CHO-K1 为亲本,通过电穿孔转染将含 E2 全长基因的表达载体导入细胞基因组,经 G418 抗性筛选及单克隆纯化获得稳定株。E2 基因由 CMV 启动子驱动表达,编码序列源自病毒包膜蛋白(如丙型肝炎病毒、冠状病毒),未添加任何标签序列,名称中 “E2" 直接标识其表达的核心功能蛋白 —— 未经修饰的天然病毒抗原。构建过程中优化了信号肽序列,确保 E2 蛋白高效分泌至培养基(分泌效率达 85% 以上),且折叠构象与天然病毒颗粒上的 E2 蛋白一致性达 90% 以上(圆二色谱检测)。
形态与增殖:体外培养呈典型上皮样形态,贴壁生长时呈多角形,排列规则;悬浮培养形成直径 25-60μm 的聚集体,细胞轮廓清晰,活力长期维持在 90% 以上。37℃、5% CO₂条件下,增殖周期约 30-36 小时,兼容含 10% 胎牛血清的 DMEM 培养基与多种无血清化学限定培养基,传代 80 次以上仍保持稳定生长速率,E2 蛋白表达量波动<10%,冻存复苏后存活率超 87%。
功能特征:该细胞系的核心优势在于 E2 蛋白的天然性:与融合蛋白相比,其表达的 E2 无 Fc 段或 His 标签干扰,完整保留病毒抗原的原始表位(ELISA 检测与天然病毒 E2 的交叉反应率>98%)。流式细胞术显示,仅 5% 以下的 E2 蛋白滞留于细胞表面,95% 以上分泌至培养基,且蛋白三聚体比例达 30%-40%(接近天然病毒包膜上的聚合状态),为研究 E2 的多聚体功能提供了理想材料。
病毒疫苗研发
抗原表位分析
抗病du药物筛选
贴壁培养操作:
复苏:从液氮取出冻存管,37℃水浴 1-2 分钟解冻,转移至含 10mL 预热培养基(DMEM+10% 胎牛血清 + 400μg/mL G418)的离心管,1000rpm 离心 5 分钟,重悬后接种至 T75 培养瓶,37℃、5% CO₂培养箱静置培养。
换液:接种 24 小时后首ci换液,去除未贴壁细胞,此后每 48 小时换液一次,收集上清可用于蛋白初步检测(ELISA 法检测浓度约 4-7μg/mL)。
传代:当细胞融合度达 80%-90% 时,弃培养基,PBS 清洗 2 次,加入 2mL 细胞解离液,37℃孵育 3 分钟,镜检细胞脱落后加入 8mL 培养基终止解离,按 1:4 比例传代至新培养瓶。
悬浮培养与蛋白纯化:
冻存流程:取对数生长期细胞,1000rpm 离心 5 分钟,用冻存液(80% 无血清培养基 + 10% 胎牛血清 + 10% DMSO)重悬至 5×10⁶个 /mL,分装至冻存管,程序降温盒 - 80℃过夜,次日转移至液氮保存,保存期可达 5 年以上,复苏后需在含 G418 的培养基中培养 2-3 代以稳定表达。
优势:E2 蛋白保留天然构象与表位,免疫原性分析更真实;无标签干扰,适合表位 mapping 与抗体特异性验证;分泌效率高,悬浮培养表达量达 4-7g/L;蛋白聚合状态接近天然病毒,功能研究可靠性强。
局限性:无标签导致纯化步骤较融合蛋白复杂(需特异性抗体亲和柱);部分 E2 蛋白可能形成错误折叠(约 5%-8%),需通过分子筛去除;因无 Fc 段稳定作用,体外半衰期较 E2-Fc 短(4℃保存 7 天活性保留 80%)。
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