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Wistar大鼠骨髓间充质干细胞系
产品型号:BY-1242
简要描述:

Wistar大鼠骨髓间充质干细胞系呈梭形贴壁生长,表达 CD29、CD90,具多向分化潜能,可向成骨、成脂分化,适用于干细胞研究、组织修复,是可靠的间充质干细胞模型。

  • 厂家实力

    Manufacturer Strength
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    Valid Warranty
  • 质量保障

    Quality Assurance

详细介绍

Wistar大鼠骨髓间充质干细胞系
Wistar大鼠骨髓间充质干细胞系作为从 Wistar 大鼠骨髓中分离获得的成体干细胞模型,因具备强大的自我更新能力和多向分化潜能,在干细胞生物学特性、组织修复机制及再生医学研究中应用广泛,是探究间充质干细胞功能及应用的重要实验工具。
细胞特性与来源背景:该细胞系源自 Wistar 大鼠股骨和胫骨骨髓,经密度梯度离心法分离并纯化获得。细胞在原代培养时呈圆形,24 小时后开始贴壁,逐渐伸展为长梭形,呈成纤维细胞样形态,胞体细长,两端尖细,细胞核呈椭圆形,核仁清晰。生长方式为贴壁生长,呈漩涡状或平行排列,传代后 24 小时贴壁率达 90% 以上。核心参数表现出间充质干细胞特征:倍增时间约 48 小时,连续传代 30 次后仍保持稳定的生物学特性;表面标志物表达du特,CD29、CD90 阳性率分别为 98% 和 96%,而造血细胞标志物 CD34、CD45 阳性率均低于 3%;具有正常的二倍体核型(染色体数 42 条),无染色体异常;无细菌、真菌、支原体等微生物污染,细胞纯度达 95% 以上,确保实验结果的可靠性。
科研应用价值:在多向分化研究中,Wistar 大鼠骨髓间充质干细胞展现出出色的分化潜能。在成骨诱导条件下,培养 14 天后,细胞碱性磷酸酶活性升高 8 倍,矿化结节形成明显,骨钙素表达量增加 10 倍;成脂诱导时,10 天后细胞内出现大量脂滴,过氧化物酶体增殖物激活受体 γ(PPARγ)表达量上升 12 倍,充分模拟了间充质干细胞向骨和脂肪细胞分化的过程,为干细胞分化机制研究提供了理想模型。
在组织修复研究方面,该细胞在体外可分泌多种细胞因子,如血管内皮生长因子(VEGF)、转化生长因子 -β(TGF-β)等,能促进血管生成和组织再生。将其应用于骨缺损模型中,可加速骨组织愈合,新生骨面积较对照组增加 40%;在心肌损伤修复研究中,可改善心肌功能,左心室射血分数提高 15%,体现了其在组织修复中的重要作用。
此外,该细胞还可用于药物筛选,评估药物对干细胞增殖和分化的影响,为再生医学相关药物研发提供支持。同时,在免疫调节研究中,其能抑制 T 淋巴细胞增殖,调节免疫反应,为自身免疫性疾病的研究提供新的思路。
培养与保存规范:培养 Wistar 大鼠骨髓间充质干细胞推荐使用含 10% 胎牛血清的 DMEM 低糖培养基,添加 1% 青mei素 - 链mei素混合液,培养环境为 37℃、5% CO₂的饱和湿度培养箱。培养基需每 2-3 天更换一次,以保证细胞获得充足营养。
传代时,当细胞融合度达到 80%-90% 时进行传代操作。先用 PBS 冲洗细胞 2 次,加入 0.25% 胰dan白酶 - EDTA 消化液,37℃孵育 3-5 分钟,待细胞变圆脱落,加入含血清的培养基终止消化,传代比例为 1:3-1:5,每 3-4 天传代一次,避免细胞过度融合影响其干细胞特性。
冻存时,冻存液采用培养基、胎牛血清和 DMSO 按 7:2:1 的比例配制,将细胞浓度调整为 1×10⁶-5×10⁶个 /ml,分装后经梯度降温盒降至 - 80℃,24 小时后转入液氮中保存。复苏时,将冻存管从液氮中取出,迅速放入 37℃水浴中解冻,离心后更换新鲜培养基,复苏后细胞存活率可达 85% 以上,且 2-3 代后即可恢复正常的生长和分化能力。运输采用干冰运输或培养瓶活细胞运输,收到细胞后需及时处理并观察细胞状态,确认无误后进行后续实验。该细胞系仅限科研使用,使用过程中需遵守相关实验规范。
Wistar 大鼠骨髓间充质干细胞系以其稳定的生物学特性、强大的分化潜能和广泛的应用前景,在干细胞研究领域占据重要地位,为深入探索干细胞的功能机制及再生医学应用提供了可靠的细胞模型。

以上信息仅供参考,详细信息请联系我们。

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