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CHO/IL-4R + pGL4.23中国仓鼠卵巢细胞系
产品型号:BY-1360
简要描述:

CHO/IL-4R + pGL4.23中国仓鼠卵巢细胞系,上皮样,贴壁生长,稳定表达 IL-4R 并携带 pGL4.23 报告载体,可响应 IL-4 信号,适用于免疫信号研究及相关药物筛选。

  • 厂家实力

    Manufacturer Strength
  • 有效保修

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  • 质量保障

    Quality Assurance

详细介绍

CHO/IL-4R + pGL4.23中国仓鼠卵巢细胞系
CHO/IL-4R + pGL4.23中国仓鼠卵巢细胞系是经双基因整合构建的免疫信号报告模型,通过稳定表达人源 IL-4 受体(IL-4R)并携带 pGL4.23 荧光素酶报告载体,实现对 IL-4/IL-4R 信号通路的可视化监测,成为研究 Th2 型免疫应答、IL-4 介导的信号传导及相关药物筛选的专属工具。其保留 CHO 细胞典型的上皮样形态与贴壁生长特性,同时因报告系统的引入具备信号响应的量化功能,为解析 IL-4R 下游通路的调控机制提供了精准实验平台。
一、细胞来源与基本特性
  • 来源与构建:该细胞系以 CHO-K1 为亲本,通过两步转染法构建:首先通过慢病毒载体导入 IL-4Rα 链编码基因,筛选获得稳定表达 IL-4R 的细胞株;再通过脂质体转染将 pGL4.23 载体(含 IL-4 响应元件驱动的荧光素酶基因)整合入基因组,经嘌呤霉素与 hygromycin 双筛选获得阳性克隆。“IL-4R + pGL4.23" 标识其双重功能 —— 受体表达与报告响应,构建过程中采用 CMV 启动子驱动 IL-4R 表达,确保受体在细胞表面的稳定呈现(流式检测阳性率>95%)。

  • 形态与增殖:体外培养呈上皮样形态,贴壁生长时细胞铺展均匀,较野生型 CHO 略大;悬浮培养适应性较差,主要以贴壁方式培养。37℃、5% CO₂条件下,增殖周期约 34-40 小时,适应含 10% 胎牛血清的 DMEM/F12 培养基,需同时添加两种抗生素(2μg/mL 嘌呤霉素 + 100μg/mL hygromycin)维持双基因稳定整合,传代 60 次以上受体表达量与报告活性波动<8%,冻存复苏后存活率超 85%。

  • 功能特征:核心优势在于信号响应的特异性与量化能力:IL-4 刺激后,IL-4R 与 γc 链形成异二聚体,激活 JAK1/3-STAT6 通路,使 pGL4.23 载体中的 STAT6 结合元件驱动荧光素酶表达,酶活性与 IL-4 浓度呈剂量依赖性(有效范围 0.1-100ng/mL,EC50=2.3ng/mL)。与天然表达 IL-4R 的细胞相比,其背景信号低(未刺激时荧光素酶活性<5% 最大响应值),信号 - to-noise 比值达 40:1,显著优于传统报告系统。

二、核心应用领域
  1. IL-4/IL-4R 信号机制研究

该细胞系是解析 IL-4R 下游通路的理想模型。通过检测不同刺激时间点的荧光素酶活性,可清晰追踪信号传导的动力学特征:IL-4 处理后 1 小时荧光素酶活性开始上升,6 小时达峰值(为基础值的 35-40 倍),24 小时仍维持 80% 以上活性,揭示通路激活的持续性。利用该模型发现,IL-4R 信号可通过 STAT6 与 AP-1 的协同作用增强下游基因表达,为 Th2 细胞因子网络的调控机制提供新证据;在受体磷酸化研究中,其可精准反映不同激酶抑制剂对 IL-4R 信号的阻断效应(如 JAK 抑制剂可使荧光素酶活性下降 90%)。
  1. 过敏性疾病机制研究

因 IL-4 是过敏性炎症的关键驱动因子,该细胞系可模拟过敏状态下的信号响应。通过将其与肥大细胞共培养,发现 IL-4R 激活可促进肥大细胞释放 IL-6(分泌量增加 2.5 倍),且该效应可被 IL-4 中和抗体阻断(抑制率>92%),为过敏性鼻炎、哮喘等疾病的发病机制提供细胞水平解释。与原代免疫细胞相比,其信号响应更均一(批间差异<6%),可排除个体差异对实验结果的干扰。
  1. 免疫调节药物筛选

在药物研发中,该细胞系可用于高通量筛选 IL-4/IL-4R 通路调节剂。通过建立荧光素酶活性抑制实验:将候选药物与 IL-4 共同孵育,检测荧光素酶活性变化,可快速区分激动剂、拮抗剂及信号通路抑制剂。例如,在抗哮喘药物筛选中,其能特异性识别 IL-4 中和抗体(IC50=0.8nM)与 JAK 抑制剂(IC50=5.2nM),筛选准确率达 90% 以上,且兼容 384 孔板检测,单日可完成 1000 种化合物的初筛。
三、培养方法
  • 贴壁培养操作

  1. 复苏:从液氮取出冻存管,37℃水浴 1-2 分钟解冻,转移至含 10mL 预热培养基(DMEM/F12+10% 胎牛血清 + 2μg/mL 嘌呤霉素 + 100μg/mL hygromycin)的离心管,1000rpm 离心 5 分钟,重悬后接种至 T75 培养瓶,37℃、5% CO₂培养箱静置培养。

  1. 换液:接种 24 小时后首ci换液,去除未贴壁细胞,此后每 48 小时换液一次,维持细胞融合度<80% 以保证信号响应灵敏度。

  1. 传代:当细胞融合度达 70%-80% 时,弃培养基,PBS 清洗 2 次,加入 2mL 细胞解离液,37℃孵育 3-4 分钟,镜检细胞脱落后加入 8mL 培养基终止解离,按 1:4 比例传代,避免过度密集导致受体表达不均。

  • 信号响应检测流程

  1. 铺板:将细胞以 5×10⁴个 / 孔密度接种至 96 孔板,培养 24 小时使细胞贴壁(融合度达 60%-70%)。

  1. 刺激与检测:弃培养基,加入含不同浓度 IL-4 的无血清培养基,37℃孵育 6 小时后,加入荧光素酶检测试剂(如 Bright-Glo),通过化学发光仪读取相对光单位(RLU),计算信号激活倍数。

  1. 药物筛选:将候选药物与 IL-4(10ng/mL)混合后加入细胞,孵育 6 小时检测 RLU,计算药物对信号的抑制率或激活率。

  • 冻存流程:取对数生长期细胞,1000rpm 离心 5 分钟,用冻存液(70% wan全培养基 + 20% 胎牛血清 + 10% DMSO + 双抗生素)重悬至 5×10⁶个 /mL,分装至冻存管,程序降温盒 - 80℃过夜,次日转移至液氮保存,保存期可达 5 年以上,复苏后需培养 2-3 代再进行信号检测以确保稳定性。

四、优势与局限性
  • 优势:IL-4R 表达稳定,信号响应特异性强(对 IL-13 等同源细胞因子交叉反应<5%);pGL4.23 报告系统灵敏度高,检测下限达 0.1ng/mL IL-4;双抗生素筛选确保基因整合稳定性;实验重复性优异(变异系数<7%),适合高通量筛选。

  • 局限性:仅反映 IL-4R/STAT6 通路,无法模拟复杂免疫微环境中的交叉调控;贴壁依赖性限制了悬浮高通量筛选;长期传代可能出现报告载体沉默(约 5% 克隆 / 60 代),需定期通过荧光素酶活性验证。

五、研究意义
CHO/IL-4R + pGL4.23 细胞系的建立为 IL-4 信号研究提供了标准化的报告工具,其受体 - 报告的偶联特性推动了对 Th2 型免疫应答机制的量化理解。在基础研究中,其助力阐明 IL-4R 下游信号的动力学特征与调控节点,为免疫调节网络的解析提供新视角;在应用领域,其加速了过敏性疾病、自身免疫病治疗药物的研发进程,尤其对 IL-4R 靶向抗体的筛选具有不可替代价值,同时为其他细胞因子受体的报告模型构建提供了可借鉴的技术框架,是连接免疫信号基础研究与药物开发的关键桥梁。

 以上信息仅供参考,详细信息请联系我们。

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