Caco-2人结直肠腺癌细胞系
Caco-2人结直肠腺癌细胞系于 1978 年从一名 72 岁男性结直肠癌患者的肿瘤组织中分离建立，因其du特的生物学特性，成为肠道生理与病理研究、药物开发领域的 “黄金模型"。该细胞系的诞生，填bu了体外模拟肠道环境研究的空白，极大推动了肠道相关科学研究的发展。
在细胞生物学特性方面，Caco-2 细胞呈现典型的上皮样形态，在培养过程中会自发进行肠上皮细胞分化。当细胞融合后，经 21 - 28 天培养，可形成具有极性的单层细胞，分化出微绒毛、紧密连接和刷状缘等结构，表达多种肠上皮特异性蛋白，如碱性磷酸酶（ALP）、二肽基肽酶 IV（DPP-IV）和葡萄糖转运蛋白 1（GLUT1），这些特征使其能高度模拟小肠上皮细胞的结构与功能。此外，Caco-2 细胞还表达多种药物转运蛋白，如 P - 糖蛋白（P-gp）、有机阴离子转运多肽（OATP）家族等，为研究药物肠道吸收与转运提供了便利。从增殖能力来看，Caco-2 细胞的倍增时间约为 72 小时，生长相对缓慢。在侵袭能力检测中，Transwell 实验显示，其穿膜细胞数较正常肠上皮细胞高出 4 - 6 倍；在三维培养体系中，Caco-2 细胞可形成类似肿瘤球体的结构，展现出恶性肿瘤细胞的特性。
Caco-2 细胞的培养需遵循特定的规范。基础培养基一般选用含 10% 胎牛血清（FBS）、1% 双抗（青mei素 - 链mei素）的 DMEM 培养基。培养环境为 37℃、5% CO₂的恒温培养箱。当细胞融合度达到 70% - 80% 时，按 1:3 - 1:4 的比例进行传代，使用 0.25% 胰dan白酶 - EDTA 消化细胞，传代周期约 5 - 7 天。若用于模拟肠上皮细胞功能研究，需在细胞融合后继续培养 21 - 28 天以诱导其充分分化。培养过程中，需定期更换培养液，每 2 - 3 天更换一次，同时严格进行无菌操作，防止细菌、真菌及支原体污染，避免影响细胞分化和实验结果。此外，由于 Caco-2 细胞分化时间较长，需密切监测细胞状态，防止因过度培养导致细胞衰老或凋亡。
凭借高度模拟小肠上皮的特性，Caco-2 细胞系在多个领域发挥着重要作用。在药物研发中，它是评估药物肠道吸收、预测体内药代动力学的关键工具。通过测定药物在 Caco-2 细胞单层的跨膜转运速率，可评估药物的吸收特性，例如硝苯di平在 Caco-2 细胞中的表观渗透系数（Papp）较高，预示其肠道吸收良好；而某些多肽类药物因受 P-gp 外排作用，Papp 值较低，吸收较差。在肠道疾病研究方面，科研人员利用 Caco-2 细胞研究结直肠癌的发病机制，发现 Wnt/β-catenin 信号通路的异常激活可促进 Caco-2 细胞的增殖与迁移；同时，该细胞系也用于研究炎症性肠病中肠道屏障功能的改变，如肿瘤坏死因子 -α（TNF-α）处理后，Caco-2 细胞的紧密连接蛋白表达下降，细胞通透性增加。在新型治疗策略探索中，基于 Caco-2 细胞模型，研究人员验证了纳米颗粒载体递送药物的有效性，以及 RNA 干扰技术对特定基因的沉默效果，为肠道疾病的治疗提供了新思路。不过，使用 Caco-2 细胞系时需注意，不同培养代数和分化程度的细胞，其生物学特性可能存在差异，实验前需通过检测 ALP 活性、Western blot 分析紧密连接蛋白表达等方法，对细胞状态进行严格鉴定，确保实验结果的可靠性和可重复性。
以上信息仅供参考，详细信息请联系我们。
详细介绍
产品咨询
联系我们
