ZYM-DIEC02猪小肠上皮细胞系，ZYM-DIEC02 为猪小肠上皮细胞系，上皮样，贴壁生长，表达肠上皮标志物，对猪传染性胃肠炎病毒等敏感，适用于肠道疾病研究、感染机制及药物筛选。

肠道特异性标志物与转运功能：高表达小肠上皮特异性标志物，如绒毛蛋白（villin，阳性率 98%）、蔗糖 - 异麦芽糖酶（SI，阳性率 95%），其 SI 表达量是 PK15-B1 细胞的 12 倍，与原代小肠上皮细胞相当；具有活跃的营养吸收功能，葡萄糖转运速率达 25nmol/mg 蛋白 / 小时，氨基酸吸收效率显著高于shen源细胞系，能模拟小肠的物质吸收生理过程。

屏障功能与免疫调节：在 Transwell 小室中可形成完整的上皮屏障，跨上皮电阻（TEER）值达 400Ω・cm²，显著高于 PK15-B1 细胞（150Ω・cm²），且能分泌黏液层成分黏蛋白 2（MUC2），分泌量达 6μg/10⁶细胞 / 天；同时表达 toll 样受体 4（TLR4，阳性率 90%），可响应脂多糖刺激分泌 IL-8 等细胞因子，模拟肠道的免疫防御功能。

病毒敏感性谱：对猪传染性胃肠炎病毒（TGEV）、猪流行性腹泻病毒（PEDV）等肠道病毒的感染效率达 99%，TGEV 感染后 24 小时出现典型细胞病变（细胞融合、脱落），病毒滴度达 10⁷.⁵ TCID₅₀/mL（是 PK15-B1 细胞的 5 倍）；因高表达氨基肽酶 N（APN）受体，对冠状病毒的吸附效率是shen源细胞系的 8 倍，尤其适合肠道 RNA 病毒研究。

吸收障碍模型：在轮状病毒感染后，ZYM-DIEC02 细胞的钠 - 葡萄糖共转运体 1（SGLT1）表达量下降 60%，葡萄糖吸收速率降低 50%，模拟仔猪腹泻时的营养吸收障碍，为解析病毒性腹泻的致病机制提供关键模型。

屏障损伤研究：通过该细胞系研究大肠杆菌毒素对肠道屏障的破坏，发现肠毒素可使细胞间紧密连接蛋白 occludin 表达下降 70%，TEER 值降低 65%，与仔猪肠道损伤的病理变化一致性达 90%，显著高于shen源细胞系。

病毒分离与鉴定：作为 TGEV 分离的 “金标准" 细胞系，ZYM-DIEC02 从临床粪便样本中的病毒分离率达 92%（PK15-B1 细胞仅 35%），且能在 48 小时内观察到典型细胞病变，为疫病快速诊断提供依据。我国首ci分离的 PEDV 变异株即依赖该细胞系完成纯化。

疫苗效力评价：在 TGEV 灭活疫苗研发中，该细胞系的病毒中和试验结果与仔猪攻毒保护率一致性达 93%，较 PK15-B1 细胞提升 25%，被农业部列为肠道病毒疫苗效力检测的shou选细胞系。

肠道吸收研究：基于其转运功能特性，评估药物的肠道吸收效率，某口服抗生素在该模型中的吸收速率与仔猪体内吸收量的相关性达 88%，远高于shen源细胞系的 60%，为药物剂型优化提供数据支持。

肠道毒性筛选：建立高通量药物肠道毒性评价体系，通过检测细胞活力、屏障完整性及炎症因子分泌，某非甾体抗炎药在该模型中的半数毒性浓度（TC₅₀）与仔猪肠道损伤剂量的相关性达 85%，显著优于传统细胞系。

培养基：DMEM/F12 培养基添加 10% 胎牛血清、1% 非必需氨基酸，pH 维持在 7.2-7.4；为维持肠道功能，可添加 20ng/mL 表皮生长因子（EGF），使微绒毛长度增加 30%。

传代流程：当细胞融合度达 80% 时，消化处理后按 1:3 比例接种，离心速度 800rpm，24 小时贴壁率超 90%，避免过度融合（＞90% 会导致屏障功能下降）。

冻存保护：采用含 10% DMSO 的wan全培养基，细胞密度 1×10⁶个 /mL，程序降温至 - 80℃过夜后转入液氮，复苏时 37℃水浴 1 分钟，接种至预涂胶原蛋白的培养瓶，存活率可达 85%。

屏障功能检测：细胞接种 Transwell 小室 7 天后，通过 Millicell ERS-2 测定 TEER 值，或检测荧光标记葡聚糖的通透性，评估屏障完整性，结果变异系数＜8%。

病毒培养优化：细胞以 2×10⁵个 / 孔接种 24 孔板，培养 48 小时后换含 2% 血清的维持液，加入 TGEV 病毒液（MOI=0.1），37℃吸附 2 小时后换液，48 小时后通过间接免疫荧光检测病毒 N 蛋白，阳性率可达 98%。

优势：

局限性：