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详细介绍
构建背景:mpl 是血小板生成素(TPO)的特异性受体,在巨核细胞增殖分化与血小板生成中起关键作用。该细胞系通过脂质体转染技术,将含 mpl 基因的 pDSr a2 载体(含 SV40 启动子与新mei素抗性基因)导入 CHO 细胞,经 G418 筛选获得稳定表达株,“X" 代表克隆编号,确保细胞群的均一性。
形态与增殖:体外培养时呈上皮样形态,贴壁生长,细胞呈多边形,排列紧密,形态与亲本 CHO 细胞一致。在 37℃、5% CO₂条件下,传代周期约 2-3 天,可适应含 10% 胎牛血清的 DMEM/F12 培养基,同时兼容无血清培养体系,悬浮培养时细胞存活率可达 85% 以上,增殖稳定性优于普通转染细胞株。
表达特征:mpl 蛋白定位于细胞膜,表达量可通过 Western blot 或流式细胞术定量(平均每细胞约 1×10⁴-5×10⁴个受体),且长期传代(>30 代)后表达量波动<10%。载体中的 SV40 启动子确保基因持续表达,新mei素抗性基因便于维持细胞株纯度,避免非表达细胞污染。
mpl 信号通路机制研究
促血小板生成药物筛选
受体 - 配体相互作用研究
优势:mpl 表达稳定且可控,避免原代细胞的异质性问题;保留 CHO 细胞的易培养特性,适合大规模实验;功能特异性高,仅响应 mpl 通路相关刺激,减少背景干扰;可通过基因编辑进一步改造(如敲除内源性信号分子),提升研究精准度,被多家实验室列为 mpl 相关研究的标准细胞系。
局限性:作为异源表达系统,mpl 的糖基化模式与人类细胞存在细微差异,可能影响配体结合效率;长期培养需维持 G418 筛选压力(通常 400μg/mL),否则易丢失表达质粒;无法wan全模拟体内巨核细胞的分化环境,研究生理功能时需结合动物模型验证。
培养条件:基础培养基为含 10% 胎牛血清、400μg/mL G418 的 DMEM/F12,添加青mei素 - 链mei素防污染。传代时用 0.25% yi酶消化,贴壁培养融合度控制在 70%-80%,避免过度密集导致表达量下降。进行功能实验前,需用无 G418 培养基培养 1-2 代,排除药物对细胞活性的影响。
功能检测优化:检测通路激活时,推荐使用无血清培养基饥饿处理 12 小时,减少血清因子干扰;TPO 刺激浓度通常为 10-100ng/mL,作用时间根据检测指标调整(如磷酸化蛋白检测取 15-60 分钟,增殖实验取 48-72 小时)。
冻存与复苏:冻存液含 10% DMSO 与 400μg/mL G418,液氮保存可维持活性 3 年以上;复苏时 37℃快速解冻,离心后用含 G418 的培养基重悬,传代 2 次后再用于实验,确保细胞状态稳定。
以上信息仅供参考,详细信息请联系我们。
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