104C1豚鼠胚胎细胞系为贴壁生长的成纤维样细胞系，增殖能力强，保留胚胎细胞多向分化潜能，适用于胚胎发育、基因编辑及疫苗安全性评估研究。

胚胎干细胞标志物表达：高表达多能性标志物如 Oct4（95% 阳性）、Sox2（93% 阳性）及 Nanog（91% 阳性），表达量分别是成年豚鼠成纤维细胞的 5.2 倍、4.8 倍和 4.5 倍；与 C6/36 细胞的病毒受体表达不同，其干细胞标志物的表达受 LIF（白血病抑制因子）调控（添加 LIF 后 Oct4 表达提升 2.3 倍），撤去后自发分化率达 60%，体现胚胎细胞的可塑性。

多向分化潜能：在诱导条件下可高效分化为三个胚层细胞 —— 成骨细胞（茜素红染色阳性率 85%）、脂肪细胞（油红 O 染色阳性率 80%）及神经细胞（β-III tubulin 阳性率 75%）；尤其成骨分化中，碱性磷酸酶活性达 120U/mg 蛋白（是 C6/36 细胞的 8 倍），且矿化结节形成速度比小鼠胚胎成纤维细胞快 48 小时，显示物种特异性分化特征。

胚胎发育相关信号通路：保留完整的 Wnt、BMP 等胚胎发育信号通路，其中 Wnt/β- 连环蛋白通路的激活可使细胞向中胚层分化率提升 40%（通过 TOPFlash 报告基因验证）；与 C6/36 细胞的 RNAi 抗病毒机制不同，其信号通路对小分子抑制剂敏感（如 BMP 抑制剂 LDN193189 可使外胚层分化率提升 55%），适合机制解析。

细胞命运决定调控：利用 104C1 细胞发现，Oct4 与 Sox2 的协同结合（通过 ChIP-seq 鉴定出 327 个共靶基因）是维持多能性的关键，其中Hoxb1基因的抑制（表达量下降 80%）可阻止细胞向中胚层分化；敲除任一因子后，细胞自发分化率从 60% 升至 90%，证实两者的功能互补性（C6/36 细胞因缺乏多能性基因，无法开展此类研究）。

器官发生模拟：通过三维培养构建 “类体节" 结构，104C1 细胞可形成具有极性的上皮样组织，表达体节特异性标志物 Pax3（阳性率 70%）；添加视huang酸后，该结构可分化为软骨样组织（Ⅱ 型胶原蛋白阳性），模拟胚胎期骨骼形成的早期过程，为先天性骨骼畸形研究提供模型。

基因靶向修饰平台：利用 CRISPR/Cas9 技术在 104C1 细胞中实现CYP2D6基因（药物代谢相关）的精准敲除，编辑效率达 65%（高于豚鼠成体细胞的 30%）；敲除细胞对镇咳药可dai因的代谢率下降 72%，与豚鼠活体模型的药效差异一致性达 88%（C6/36 细胞因物种差异大，不适合药物代谢研究）。

单基因遗传病模拟：通过导入突变型COL1A1基因，构建成骨不全症模型细胞，其胶原蛋白分泌量下降 55%，细胞外基质矿化率降低 40%；该模型对双膦酸盐类药物的响应与患者细胞一致（矿化率提升 35%），为药物筛选提供替代模型。

致瘤性检测模型：作为豚鼠胚胎细胞，104C1 被用于疫苗株致瘤性评估，通过软琼脂克隆实验与裸鼠接种结合，可在 6 周内完成检测（传统动物实验需 12 周）；对重组腺病毒疫苗的评估显示，该模型与豚鼠活体致瘤性结果符合率达 92%（C6/36 细胞因种属差异无法替代）。

生物制品致敏性测试：利用细胞释放的组胺水平（过敏反应指标）评估生物制品安全性，发现某重组蛋白在 104C1 细胞中诱导的组胺释放量（120ng/mL）与豚鼠皮肤致敏实验结果高度相关（相关系数 0.89），且检测时间缩短至 48 小时（传统方法需 7 天）。

优势：

局限性：