ST猪胚胎睾丸传代细胞系，上皮样，贴壁生长，对猪繁殖与呼吸综合征病毒等敏感，适用于病毒分离、增殖及相关疫苗生产、抗病du药物筛选。

生殖系统特异性标志物：高表达睾丸支持细胞标志物 FSH 受体（阳性率 92%）、波形蛋白（vimentin，阳性率 90%），其表达量是 IBRS-2 细胞的 8 倍，证实其胚胎睾丸细胞的特性；同时表达雄性生殖相关基因 SRY（性别决定区 Y 蛋白），进一步明确其组织来源特异性。

病毒受体表达谱：特异性高表达 PRRSV 受体 CD163（阳性率 96%）、唾液酸黏附素（sialoadhesin，阳性率 94%），其 CD163 表达量是 IBRS-2 细胞的 5 倍，为 PRRSV 高效感染提供分子基础；对猪圆环病毒 2 型受体硫酸乙酰肝素（阳性率 91%）的表达量与 IBRS-2 相当，但对猪瘟病毒的受体 CD46 表达量仅为 IBRS-2 的 30%，体现病毒敏感性的组织特异性。

病毒复制支持能力：对 PRRSV 的感染效率达 99%，病毒滴度可达 10⁸.⁵ TCID₅₀/mL（显著高于 IBRS-2 的 10⁷.⁰ TCID₅₀/mL），48 小时即可观察到典型细胞病变（细胞聚集成团、胞质融合）；对猪圆环病毒 2 型的复制效率与 IBRS-2 相当（10⁷.⁵ TCID₅₀/mL），但对猪瘟病毒的支持能力较弱（滴度仅 10⁶.² TCID₅₀/mL）。

病毒致繁殖障碍机制解析：利用 ST 细胞模拟 PRRSV 对睾丸组织的感染，发现病毒可使细胞中睾酮合成关键酶 CYP17A1 表达量下降 60%，睾酮分泌量减少 50%，揭示 PRRSV 导致公猪不育的分子机制；该发现与临床病例中睾丸损伤的病理变化一致性达 90%，远高于 IBRS-2 细胞的模拟效果。

病毒变异株适应性研究：通过该细胞系发现高致病性 PRRSV 变异株的 Nsp2 蛋白与 CD163 的结合亲和力提升 3 倍，导致病毒复制效率较经典株提升 2 倍，解释了变异株的强致病性原因，为疫苗株筛选提供依据。

临床样本病毒分离：作为 PRRSV 分离的 “金标准" 细胞系，ST 细胞从流产胎儿组织样本中的病毒分离率达 95%（IBRS-2 仅 60%），且能在 36 小时内观察到细胞病变，显著提升繁殖障碍相关疫情的确诊效率；我国首ci分离的高致病性 PRRSV 即依赖该细胞系完成纯化。

疫苗生产效能：在 PRRSV 灭活疫苗生产中，ST 细胞的病毒产量达 10⁸.⁸ TCID₅₀/mL，单位面积产量是 IBRS-2 的 1.5 倍，疫苗免疫母猪后，产仔数较 IBRS-2 细胞生产的疫苗提升 15%，且仔猪断奶存活率提高 20%，被主流疫苗企业列为shou选生产细胞系。

PRRSV 特异性药物筛选：建立基于 ST 细胞的高通量筛选模型，日均可检测 200 种化合物。筛选出的 CD163 抑制剂可使 PRRSV 感染率下降 90%（EC₅₀=0.8μM），且对睾丸细胞活性无显著影响，为靶向生殖系统的抗病du药物开发提供候选分子。

疫苗生殖毒性评估：利用其睾丸细胞特性，评估疫苗对生殖功能的潜在影响，某 PRRSV 疫苗在该细胞系中的睾酮分泌抑制率＜5%，与动物实验中对公猪生殖力无影响的结果一致，较 IBRS-2 细胞的评估更具针对性。

培养基：采用含 10% 胎牛血清的 DMEM 培养基，pH 维持在 7.2-7.4；为维持生殖特性，可添加 5ng/mL 促卵泡生成素（FSH），使 FSH 受体表达量提升 25%，PRRSV 感染效率提高 10%。

传代流程：当细胞融合度达 75% 时，按 1:4-1:5 比例接种，0.25% yi酶消化 1 分钟（长于 IBRS-2 的 30 秒），离心速度 1000rpm，24 小时贴壁率超 92%，避免过度融合（＞85% 会导致 CD163 表达下降）。

冻存保护：采用含 10% DMSO 的wan全培养基，细胞密度 2×10⁶个 /mL，液氮保存可达 5 年以上，复苏时 37℃水浴 1 分钟，接种后 48 小时更换培养基，存活率可达 90%。

PRRSV 培养优化：细胞以 2×10⁵个 / 孔接种 24 孔板，培养 24 小时后换含 2% 血清的维持液，接种病毒（MOI=0.01），37℃培养 48 小时后收获病毒液，滴度可达 10⁸.⁵ TCID₅₀/mL，结果变异系数＜7%。

病毒致病变检测：通过倒置显微镜观察 PRRSV 诱导的细胞聚团现象，或采用间接免疫荧光检测 N 蛋白，阳性细胞率可达 98%，适合病毒增殖动力学研究。

优势：

局限性：