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首页-产品系统-细胞-细胞系-BY-0803WEHI 231小鼠B淋巴细胞系

WEHI 231小鼠B淋巴细胞系
产品型号:BY-0803
简要描述:

WEHI 231小鼠B淋巴细胞系,B 细胞表型,悬浮生长,IgM⁺,对 LPS 反应弱,易凋亡,适用于 B 细胞分化、抗体生成及凋亡机制研究。

  • 厂家实力

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详细介绍

WEHI 231小鼠B淋巴细胞系

WEHI 231小鼠B淋巴细胞系源自 BALB/c 小鼠的 B 细胞淋巴瘤,是保留未成熟 B 细胞表型和高凋亡敏感性的经典模型,在 B 细胞分化、抗体生成调控及凋亡机制研究中具有不可替代的价值,尤其因对 B 细胞受体(BCR)信号的du特反应性,成为解析 B 细胞耐受与活化平衡的关键工具。

该细胞系呈现典型的未成熟 B 细胞形态与表型特征。显微镜下,细胞呈圆形或类圆形,以悬浮生长为主,偶见松散聚集体(直径<100μm),单个细胞直径约 8-10μm,核质比高(约 0.7),细胞核呈圆形,染色质呈粗块状,可见 1-2 个核仁,核分裂象每 10 个高倍视野 5-6 个,胞质少而嗜碱性,可见少量嗜天青颗粒。电镜下可见胞质内富含游离核糖体,线粒体呈圆形或短杆状,符合淋巴细胞的超微结构特点。免疫表型分析显示,细胞高表达 B 细胞标志物 CD19(阳性率 98%)、CD20(阳性率 95%)和 IgM(膜结合型,阳性率 90%),低表达 CD21(阳性率 30%)和 MHCⅡ 类分子(I-Aⁿ,阳性率 40%),不表达 CD3(T 细胞标志物)和 Gr-1(粒细胞标志物),证实其未成熟 B 细胞特性,与骨髓中过渡期 B 细胞表型高度相似。
体外培养体系中,WEHI 231 细胞展现出du特的增殖与凋亡特性。最适培养条件为含 10% 胎牛血清的 RPMI 1640 培养基(添加 50μM 2 - 巯基乙醇),在 37℃、5% CO₂环境下,传代周期约 48 小时,倍增时间约 36 小时,显著快于正常 B 细胞。其核心特征是对 BCR 交联诱导的凋亡高度敏感:经抗 IgM 抗体处理后,6 小时出现明显凋亡形态(染色质凝聚、细胞膜皱缩),24 小时凋亡率达 70%,而成熟 B 细胞系仅 15%,这种特性模拟了未成熟 B 细胞在接触自身抗原时的阴性选择过程。细胞在无血清培养基中 48 小时凋亡率达 80%,添加 IL-4 可使凋亡率降至 30%,证实细胞因子对其存活的调控作用,与体内 B 细胞发育依赖细胞因子微环境的特点一致。软琼脂克隆形成率约 20%,连续传代 40 次内,IgM⁺表型及凋亡敏感性无明显改变,冻存复苏存活率超 90%,复苏后 24 小时需更换培养基去除死细胞。
BCR 信号通路研究揭示其du特的调控模式。Western blot 分析显示,基础状态下细胞内 ERK 磷酸化水平较低,BCR 交联后 5 分钟 p-ERK 水平升高 6 倍,但持续时间短(30 分钟后下降至基础水平的 2 倍),与成熟 B 细胞的持续激活模式不同。下游钙信号通路表现为短暂 Ca²⁺内流(峰值在 2 分钟,10 分钟恢复基线),而成熟 B 细胞 Ca²⁺浓度可维持 30 分钟以上。这种信号特征与细胞内 SHIP1 磷酸酶的高表达相关(是成熟 B 细胞的 4 倍),SHIP1 可快速终止 PI3K/Akt 通路激活(p-Akt 在 15 分钟降至基础水平),导致抗凋亡蛋白 Bcl-2 表达不升高,最终引发凋亡。敲除 SHIP1 后,BCR 诱导的凋亡率下降至 25%,证实其在凋亡调控中的核心作用。
凋亡机制研究中,WEHI 231 细胞是解析线粒体依赖途径的理想模型。抗 IgM 处理后,细胞se素 c 从线粒体释放至胞质的量在 6 小时增加 5 倍,caspase-9 和 caspase-3 活性分别升高 8 倍和 10 倍,而 caspase-8 活性无明显变化,证实其凋亡主要依赖内源性途径。Bax 蛋白在处理后发生构象改变并向线粒体聚集(线粒体 Bax 含量增加 4 倍),Bcl-2/Bax 比值从 1.2 降至 0.3,这种平衡失调是线粒体膜电位崩溃的关键原因(JC-1 染色显示膜电位下降 60%)。与其他凋亡模型相比,其凋亡过程不依赖死亡受体激活,信号通路更单纯,适合研究线粒体通透性转换的调控机制。
在 B 细胞耐受研究中,该细胞系模拟了自身反应性 B 细胞的清除过程。当用抗 IgM 抗体持续刺激时,细胞不仅发生凋亡,还表现出受体编辑现象:免疫球蛋白轻链基因 VJ 重组相关的 RAG1/2 表达上调 3 倍,新的轻链基因重排使部分细胞(约 10%)膜 IgM 表达消失,转而表达 IgG,这种表型转换与骨髓中自身反应性 B 细胞的受体编辑机制一致。共培养实验显示,树突状细胞分泌的 IL-10 可抑制受体编辑(RAG1/2 表达下降 50%),促进凋亡,而 T 细胞来源的 CD40L 可逆转这一过程(凋亡率下降至 20%),证实免疫微环境对 B 细胞耐受的调控作用。
药物筛选应用中,WEHI 231 细胞被用于评估 B 细胞相关疾病的治疗药物。基于其对 BCR 诱导凋亡的敏感性,可筛选调控 B 细胞存活的化合物,某新型 PI3Kδ 抑制剂处理后,BCR 诱导的凋亡率从 70% 提升至 90%,同时抑制细胞增殖(IC50 约 0.5μM),体内实验显示该药物可减少小鼠脾脏 B 细胞数量 30%,为 B 细胞淋巴瘤治疗提供了候选分子。其对糖皮质激素的敏感性较低(地塞mi松 IC50 1μM),而对钙调磷酸酶抑制剂敏感(环bao素 A IC50 0.1μM),这种差异反应性可用于区分药物作用靶点。
抗体生成研究中,该细胞系展现出du特的分泌特性。虽然细胞主要表达膜结合型 IgM,但经 LPS 和 IL-4 联合刺激后,5% 的细胞可分泌 IgM(ELISA 检测浓度达 50ng/mL・24h),同时发生部分分化(CD23 表达上调至 60%),但无法分化为浆细胞(不表达 CD138),证实其未成熟状态限制了终末分化。基因表达谱分析显示,BLIMP1(浆细胞分化关键转录因子)表达量仅为成熟 B 细胞的 1/5,过表达 BLIMP1 可使 IgM 分泌量增加 3 倍,说明转录水平调控是其分泌功能受限的主要原因。
在免疫调节研究中,WEHI 231 细胞与 T 细胞的相互作用为解析 B-T 细胞协作提供了模型。与 CD4⁺T 细胞共培养时,细胞可通过 CD40-CD40L 相互作用获得存活信号(凋亡率下降 40%),同时上调 CD80/CD86 表达(分别增加 3 倍和 2 倍),增强抗原提呈能力。T 细胞分泌的 IL-21 可进一步促进其增殖(增殖率增加 50%),这种协同效应依赖完整的 T 细胞受体信号,阻断 TCR 可使上述效应消失,模拟了体内 B 细胞依赖 T 细胞辅助的活化过程。

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