RL1大鼠肺细胞系
RL1大鼠肺细胞系作为源自大鼠肺组织的上皮细胞模型，因保留肺上皮细胞te有的呼吸功能相关特性、屏障保护作用及损伤应答机制，在肺部生理功能调控、呼吸系统疾病机制及药物肺毒性评估中具有重要价值，成为探究肺部相关疾病的关键实验工具。
细胞特性与来源背景：该细胞系源自大鼠肺实质的支气管及肺泡上皮组织，经原代培养和纯化获得。细胞形态呈典型的上皮样，多为立方形或多边形，胞体大小均匀（直径约 16-22μm），胞质丰富且呈嗜酸性，可见大量线粒体和内质网，约 12% 的细胞存在细小胞质突起，细胞核呈圆形或椭圆形，位于细胞中央，核仁清晰。生长方式为贴壁生长，呈单层铺路石样排列，接触抑制明显，传代后 24 小时贴壁率达 94%。核心参数符合正常肺上皮细胞特征：倍增时间约 58 小时，连续传代 20 次后仍保持稳定的生物学特性；表面标志物表达独te，甲状腺转录因子 - 1（TTF-1）阳性率达 95%，细胞角蛋白 18（CK18）阳性率 93%，紧密连接蛋白 occludin 阳性率 90%；具有正常的二倍体核型（染色体数 42 条），无染色体畸变；呼吸功能相关特性显著，可表达肺泡表面活性物质相关蛋白 A（SP-A），基础分泌量达 28ng/mL，对氧气的转运效率达适宜生理范围；分泌功能活跃，炎症因子 IL-6 基础分泌量为 15pg/mL，受刺激后可显著升高；无微生物污染，细胞纯度达 97%，保障实验结果的可靠性。
科研应用价值：在呼吸功能相关机制研究中，RL1 细胞经低氧（5% 氧气）处理 48 小时后，缺氧诱导因子 - 1α（HIF-1α）表达量增加 4.3 倍，血管内皮生长因子（VEGF）分泌量提升 60%，可模拟缺氧状态下肺上皮细胞对呼吸功能的调节过程，为解析肺部氧气代谢的分子机制提供理想模型。
肺部炎症研究方面，该细胞经脂多糖（LPS）处理后，炎症因子 TNF-α 分泌量增加 5.2 倍，白细胞介素 - 8（IL-8）表达量提升 65%，细胞凋亡率达 38%；而经抗炎药物处理后，炎症反应强度下降 58%，细胞存活率提升 52%，可模拟细菌性肺炎中的肺上皮损伤过程，适用于探究肺部炎症的发病机制及治疗策略。
肺损伤修复研究领域，该细胞经二氧化氮（肺损伤诱导剂）处理后，氧化应激水平提升 70%，修复相关基因 HSP70 表达量增加 4.8 倍，细胞迁移速率提升 55%，能很好地模拟化学性肺损伤及修复过程，为探究肺损伤后的再生机制提供实验基础。此外，该细胞与肺巨噬细胞共培养时，巨噬细胞的吞噬活性提升 45%，炎症因子分泌量增加 3.2 倍，可用于探究肺上皮细胞与免疫细胞相互作用在肺部疾病中的调控机制。
培养与保存规范：推荐使用含 10% 胎牛血清的 DMEM/F12 培养基，添加 2mM 谷an酰胺、0.1ng/mL 表皮生长因子（EGF）及 1% 抗生素混合液，培养环境为 37℃、5% CO₂饱和湿度培养箱。培养基需每 2-3 天更换一次，以维持细胞的正常功能和活性。传代时，用 PBS 冲洗细胞 2 次，加入专用上皮细胞解离液，37℃孵育 8-10 分钟，待细胞间隙增大后轻轻吹打使细胞脱落，传代比例为 1:2-1:3，每 5-6 天传代一次，避免过度传代导致功能下降。
冻存液采用培养基 + 10% DMSO+20% 胎牛血清的混合液，细胞浓度调整为 3×10⁶个 /ml，经程序降温（-20℃1 小时→-80℃过夜→液氮保存）后，复苏存活率达 86% 以上，3-4 代内可恢复正常的生长和功能。运输采用干冰冷冻运输或培养瓶活细胞运输，收到细胞后需静置培养 24 小时，更换培养基后观察细胞形态，确认无异常漂浮物且排列规则后进行实验。该细胞系仅限科研使用，操作时需避免频繁更换培养条件，以防影响其呼吸功能相关特性及损伤应答能力。
RL1 大鼠肺细胞系以其稳定的肺上皮特性、完整的呼吸功能相关特征及典型的损伤应答能力，在肺部生理研究、呼吸系统疾病机制探索及药物研发中发挥着重要作用，为揭示肺部疾病的发病机制和开发肺保护药物提供了可靠的细胞模型。
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