RMC大鼠肾系膜细胞系
RMC大鼠肾系膜细胞系作为源自大鼠肾小球系膜区的功能细胞模型，因保留肾小球系膜细胞te有的收缩、增殖及基质分泌功能，在肾小球疾病机制研究中占据重要地位，成为探究系膜增生性肾炎及糖尿病肾病的关键实验工具。
细胞特性与来源背景：该细胞系源自大鼠正常肾小球系膜组织，经原代培养和纯化建立。细胞形态在静息状态下呈星状或多角形，胞体伸展充分，具有多个细长突起，细胞核呈椭圆形，核仁清晰；受刺激后细胞收缩，突起缩短，体积缩小 20%，呈现梭形化改变。生长方式为贴壁生长，呈放射状排列，形成网络样结构，接触抑制较弱，传代后 24 小时贴壁率达 95%。核心参数表现出系膜细胞特征：倍增时间约 60 小时，连续传代 50 次后仍保持正常二倍体核型（染色体数 42 条）；系膜细胞标志物肌动蛋白（α-actin）、结蛋白（Desmin）免疫荧光阳性率分别为 97% 和 89%，不表达上皮细胞标志物 CK18；基础状态下胶原蛋白 IV（Col IV）分泌量达 18μg/10⁶细胞 / 24h，是肾成纤维细胞的 1.7 倍，硫酸ruan骨素蛋白聚糖表达丰富；无微生物污染，细胞纯度达 96%，保障实验结果的可靠性。
科研应用价值：在肾小球疾病机制研究中，RMC 细胞经高糖（30mM）处理 7 天后，细胞增殖活性提升 45%，Col IV 表达量增加 3.2 倍，血小板衍生生长因子（PDGF）受体磷酸化水平升高 2.8 倍，可模拟糖尿病肾病中系膜细胞增生及基质积聚过程，为解析代谢性肾损伤机制提供理想模型。药物干预研究方面，该细胞在血管紧张素 II 受体拮抗剂处理下，Ang II 诱导的细胞收缩率下降 58%，细胞外基质分泌量减少 42%，能很好地反映肾脏保护药物的作用效果，助力靶向治疗研究。在肾小球炎症研究领域，该细胞与巨噬细胞共培养时，脂多糖（LPS）刺激可使 RMC 的肿瘤坏死因子 -α（TNF-α）分泌量增加 6.3 倍，白细胞介素 - 1β（IL-1β）释放量上升 4.8 倍，激活的系膜细胞进一步促进巨噬细胞浸润，形成 “炎症放大循环" 模型，适用于研究肾小球肾炎的免疫病理过程。此外，将该细胞接种于肾小球基底膜支架上，可构建体外肾小球模型，用于评估药物对肾小球滤过功能的影响。
培养与保存规范：推荐使用含 10% 胎牛血清的 RPMI-1640 培养基，添加 1% 抗生素混合液及 5ng/ml 胰岛素，培养环境为 37℃、5% CO₂饱和湿度的恒温培养箱。诱导病理模型时，高糖处理采用含 30mM D - 葡萄糖的培养基，炎症模型采用 1μg/ml LPS 刺激，处理时间根据实验需求设定为 24-168 小时。培养基需每 3 天更换一次，避免代谢废物堆积。传代时采用 0.25% 胰dan白酶 - EDTA 消化液处理，37℃孵育 8-10 分钟，待细胞突起回缩后加入含血清的培养基终止消化，传代比例为 1:2-1:3，每 5-6 天传代一次，维持细胞融合度在 70%-80% 以保持正常功能。冻存液配方为基础培养基 + 10% DMSO+20% 胎牛血清，经程序降温（-20℃1 小时→-80℃过夜→液氮保存）后，复苏细胞存活率达 92% 以上，3-4 代内可恢复正常的收缩与分泌功能。运输采用 T-25 培养瓶活细胞运输，收到细胞后需静置培养 24 小时，更换培养基后观察细胞突起形态，确认无异常漂浮物后进行后续实验。该细胞系仅限科研使用，禁止用于临床诊疗相关研究。
RMC 大鼠肾系膜细胞系以其稳定的肾小球系膜细胞功能、明确的病理反应特性及易于培养的优势，在肾小球疾病基础研究与药物开发中发挥着重要作用，为揭示肾脏滤过单位损伤机制和开发新型肾脏保护策略提供了可靠的实验平台。
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