Vero/Slam/V非洲绿猴肾细胞系，Vero/Slam/V 为表达 Slam 受体的非洲绿猴肾细胞系，上皮样，贴壁生长，对麻疹病毒等敏感，支持高效复制，适用于病毒研究及疫苗研发。

Slam 表达与定位：Slam 主要定位于细胞膜表面，表达量达 1.2×10⁵分子 / 细胞（流式细胞术定量），较亲本细胞高 20 倍以上，且呈均一性表达（变异系数＜8%），为病毒感染提供均一的受体环境。

病毒敏感性：对麻疹病毒的感染效率达 98%（免疫荧光检测核蛋白 NP），感染后 48 小时病毒滴度达 10⁷-10⁸ PFU/mL，较 Vero 细胞高 2-3 个数量级；对犬瘟热病毒、小反刍兽疫病毒等其他副黏病毒也具有广谱敏感性，滴度提升 1-2 个数量级。

生物安全性：无致瘤性（裸鼠接种实验阴性），外源病毒与支原体检测均为阴性，符合人用疫苗生产的细胞基质要求。

病毒分离与分型：作为麻疹病毒分离的 “金标准" 改造细胞系，临床样本接种后分离效率达 96%，较传统 Vero 细胞高 40%，可通过蚀斑形态差异区分疫苗株与野毒株（疫苗株蚀斑较小且边缘规则）。其分离的病毒株经全基因组测序验证，遗传一致性达 99.5%，为麻疹病毒基因型监测提供标准化毒株。

减毒活疫苗生产：因病毒产量高且安全性可靠，已用于麻疹减毒活疫苗的工业化生产。在微载体培养系统中，麻疹病毒滴度达 5×10⁷ PFU/mL，单批次 500L 反应器可生产 500 万剂疫苗，批间差异＜5%，疫苗中残留宿主细胞 DNA＜10pg / 剂，符合 WHO 规定的生物制品标准。

跨物种病毒研究：对犬瘟热病毒（CDV）的敏感性显著提升，感染后可观察到典型细胞病变（多核合胞体形成），为 CDV 的跨物种传播机制研究提供模型。例如，通过比较不同动物源 Slam 受体在该细胞中的表达差异，揭示了 CDV 从犬向熊猫传播的受体适应性突变。

快速诊断应用：可用于副黏病毒感染的病原学诊断，将临床样本接种后 48 小时内通过免疫荧光检测病毒抗原，诊断符合率达 92%，较传统 RT-PCR 方法缩短检测时间 24 小时，为疫情快速响应提供技术支持。

药物活性评估：基于其高病毒产量，可构建高通量药物筛选模型。例如，通过检测融合抑制剂对麻疹病毒包膜与细胞膜融合的阻断效果，测定其 EC₅₀=0.8μM，与动物实验结果一致性达 0.93，为抗麻疹病du药物研发提供可靠数据。

病毒入侵机制解析：利用该细胞系研究麻疹病毒与 Slam 的相互作用，已鉴定出 Slam 的 D1 结构域是病毒结合的关键位点，为靶向受体的抗病du药物设计提供分子靶点。

培养基：DMEM 高糖培养基添加 10% 胎牛血清，pH 维持在 7.2-7.4，可加入非必需氨基酸提升细胞活力。

传代流程：当细胞融合度达 80%-90% 时，弃旧培养基，PBS 洗涤 2 次，加入细胞解离液，37℃孵育 3-5 分钟至细胞脱落，加入含血清的培养基终止消化，按 1:4 比例接种至新培养瓶，避免过度融合导致 Slam 表达下调。

冻存保护：取对数生长期细胞，用含 10% DMSO 的wan全培养基重悬至密度 1×10⁶个 /mL，程序降温后液氮保存，复苏后传代 2 次再用于病毒实验（确保受体表达稳定）。

麻疹病毒接种：细胞以 2×10⁵个 / 孔接种 24 孔板，培养 24 小时至融合度 70%，用无血清培养基稀释病毒（MOI=0.01），37℃吸附 1 小时，换含 2% 血清的维持液，72 小时后通过蚀斑实验测定病毒滴度，或通过免疫荧光检测 NP 蛋白评估感染效率。

药物筛选操作：感染前 1 小时加入待筛药物，感染后继续培养 48 小时，通过 CCK-8 检测细胞活力（排除毒性），同时检测病毒产量，计算药物抑制率与选择指数（SI=CC₅₀/EC₅₀）。

优势：

局限性：