Burkitts人淋巴瘤细胞系

检测原理

产品特点

• 纯度高：细胞纯度≥95%，经形态学鉴定、免疫组化染色及微生物检测（细菌、真菌、支原体、病毒），均无杂细胞及微生物污染，可直接用于实验，能有效保证实验结果的准确性和重复性，契合肿瘤学及免疫学科研的严格要求；

• 生物学特性稳定：细胞增殖能力强，可连续传代培养，传代过程中形态及病理功能无明显退变，实验重复性强，可稳定表达B淋巴细胞及淋巴瘤特异性标志物，c-myc基因表达稳定，经多次传代后仍能保持良好的细胞活性及肿瘤特性，符合长期科研实验的需求；

• 功能完整性：保留该细胞系的核心功能，具有良好的悬浮生长能力和肿瘤增殖、侵袭特性，可正常响应hua疗药物、靶向药物的干预，能稳定表达淋巴瘤相关异常蛋白，真实模拟人体内Burkitts淋巴瘤细胞的病理特性，实验结果具有良好的临床相关性，可用于淋巴瘤发病机制的深入探究；

• 操作便捷：采用淋巴瘤细胞专用标准化培养体系，解冻后可快速复苏（复苏存活率≥85%），培养条件温和（常规37℃、5% CO₂培养），无需特殊试剂及复杂操作，适合常规实验室培养与操作，降低实验门槛，可参考标准化肿瘤细胞培养流程进行复苏、传代及功能学实验操作；

• 适用性广：可用于多种科研场景，包括Burkitts淋巴瘤发病机制探究、肿瘤细胞增殖与凋亡机制研究、抗淋巴瘤药物筛选与药效评估、c-myc基因功能验证、淋巴瘤诊断标志物筛选等，满足不同科研需求，同时可用于肿瘤细胞共培养、药物耐药机制研究等场景，为Burkitts淋巴瘤相关科研及临床转化提供可靠的细胞模型。

适用样本类型

• 细胞生物学实验：包括细胞增殖、凋亡、侵袭及传代规律等基础实验，用于研究其生物学行为及肿瘤特性，可开展细胞培养条件优化、增殖调控机制、凋亡信号通路等相关实验，同时可用于肿瘤细胞耐药机制研究，为淋巴瘤治疗研究提供支撑；

• 肿瘤学相关研究：用于Burkitts淋巴瘤发病机制探究，可作为体外模型模拟淋巴瘤细胞的异常增殖、侵袭及恶变过程，结合c-myc基因及相关蛋白检测，探究肿瘤发生发展的分子机制，同时可用于淋巴瘤转移相关研究，为淋巴瘤的诊治提供新思路；

• 分子生物学实验：用于淋巴瘤细胞相关基因、蛋白表达检测，如RT-PCR、Western blot、免疫组化等实验，探究肿瘤增殖、凋亡及c-myc基因调控相关分子机制，同时可用于淋巴瘤相关标志物的表达调控研究，为淋巴瘤诊断提供技术支撑；

• 药物筛选与药效评估：用于抗淋巴瘤药物（如hua疗药物、靶向药物、免yi治疗药物）的体外筛选，检测药物对细胞活性、增殖及凋亡的影响，评估药物疗效及安全性，为淋巴瘤药物研发提供支撑，同时可用于药物耐药机制及联合用药研究；

• 其他：可用于肿瘤细胞共培养、淋巴瘤体外模型构建、免疫细胞杀伤实验等科研场景，具体应用可结合实验需求调整，同时可用于验证新型治疗技术对肿瘤细胞的抑制作用，建议控制细胞传代次数，避免传代过多导致遗传特性改变。

储存与注意事项

（一）储存条件

• 冻存细胞：置于-196℃液氮中长期储存，优先选择处于对数生长期、活性稳定的细胞进行冻存，冻存时需使用肿瘤细胞专用冻存液（含20%FBS、10%DMSO、5%肿瘤细胞生长因子），储存时需确保液氮液位稳定，避免细胞反复冻融（冻融次数≤3次），否则会导致细胞活性下降、肿瘤特性改变或死亡，冻存后可在半年后复苏检测细胞存活率，确保细胞状态良好，冻存细胞不宜长期存储在-80℃环境中，应尽快转移至液氮罐中；

• 复苏后细胞：复苏后的细胞需立即放入37℃水浴锅中快速晃动融化（时间控制在1分钟内），以800-1000r/min的速度离心5分钟，去除冻存液中的DMSO后，接种至含专用wan全培养基的培养瓶中，置于37℃、5% CO₂、饱和湿度的培养箱中培养，24-48小时后更换培养基，去除死细胞及细胞碎片，新复苏细胞24小时内避免频繁观察和更换培养基，防止影响细胞增殖，将培养瓶放入培养箱时，可轻轻旋松瓶盖以保证气体充分交换（若使用透气性瓶盖则无需旋松）；

• 培养基储存：配套专用wan全培养基需置于4℃冷藏储存，避免高温、强光直射，储存期限不超过1个月，使用前需恢复至室温并轻轻摇匀，解冻血清时需逐步解冻，避免快速变温，防止产生血清沉淀物，血清中出现的纤维蛋白、磷酸钙等沉淀物不影响细胞生长，可通过离心去除，培养基中需添加新鲜肿瘤细胞生长因子，现配现用，避免生长因子失活；

• 运输条件：细胞运输采用干冰低温运输（-80℃），运输过程中需做好防震、防潮措施，避免温度波动，运输时间不超过72小时，接收后立即放入对应储存环境，若无法立即储存，可在干冰上暂时保存，避免常温放置过久，运输过程中需做好细胞标识，防止混淆，运输前可适当调整细胞密度，确保复苏后存活率。

（二）注意事项

• 本产品仅用于科研，严禁用于临床诊断、治疗或其他非科研用途，严禁直接接触人体或用于人体相关实验，实验过程中需严格遵循人体细胞实验相关伦理要求，未预约者不得进行细胞实验，细胞取材及使用需符合伦理规范；

• 细胞复苏、培养、传代需严格遵循无菌操作原则，实验环境需符合细胞培养要求，实验器具需经紫外灯照射30分钟和通风30分钟后使用，操作前需用75%酒精对器具进行消毒，避免微生物污染；该细胞系为悬浮生长细胞，传代时可采用直接吹打稀释法，无需消化，传代比例建议为1:3-1:5，确保细胞增殖空间，传代过程中需避免细胞聚团过多，可通过轻柔吹打分散细胞；

• 细胞培养过程中，需定期观察细胞形态、生长状态及增殖情况，若培养基出现异常颜色，多为CO₂溢出或细胞代谢异常导致，可轻轻旋松瓶盖放入培养箱校正，异常颜色培养基可根据细胞状态判断是否继续使用；若培养液变黄或变浊，可能是细胞密度过高或细菌污染，需及时传代或丢弃处理；若发现真菌或霉菌污染，需用紫外灯照射培养箱去除孢子，并进行消毒；培养过程中避免剧烈晃动培养瓶，防止细胞聚团影响增殖，定期检测细胞活力，及时去除死细胞；

• 处理细胞支原体污染时，建议优先更换新的细胞株，若细胞珍贵，可尝试使用支原体清除试剂进行治疗，支原体污染易复发，需做好后续监测，支原体污染会影响细胞增殖、肿瘤特性及药物响应性，需严格控制；

• 细胞换液时机可根据细胞状态调整，复苏后隔天更换一次培养基，后续每2-3天更换一次，换液时动作轻柔，缓慢加入培养基，避免冲击细胞，换液量为培养基总量的1/2-2/3，避免wan全更换培养基导致营养成分骤变，影响细胞增殖及肿瘤特性，换液时可收集上清液用于肿瘤相关蛋白或细胞因子检测；

• 冻存细胞时，需将细胞悬液以800-1000r/min离心3-5分钟，丢弃上清液后用预冷的肿瘤细胞专用冻存液重悬细胞，细胞密度控制在1×10⁶~1×10⁷个/ml，分装后标记细胞种类、冻存时间及操作人员，放入程序降温盒置于-80℃过夜后，再转移至液氮中长期储存，建立细胞冻存台账，便于追溯，冻存前可检测细胞活性及c-myc蛋白表达，确保冻存细胞功能稳定；

• 取出液氮罐中的细胞时，务必加强个人防护，避免冻伤；细胞操作时动作要轻，避免剧烈吹打造成细胞机械损伤，切忌用水直接冲洗细胞，可用0.1M PBS轻轻冲洗，避免影响细胞活性及肿瘤特性；

• 实验过程中产生的细胞废液、废弃培养基及用过的培养耗材，需经灭菌处理后再丢弃，避免生物污染；操作人员需穿戴无菌手套、口罩、实验服，做好个人防护，实验结束后及时消毒实验台面，实验废弃物需按生物安全规范处理，含肿瘤细胞及药物相关废液需单独收集处理，避免交叉污染。

订购信息

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